МЕДИЦИНСКАЯ СЕСТРА ПРОЦЕДУРНОГО КАБИНЕТА
(Продолжение)
12. Профилактика ВИЧ-инфекций и вирусных гепатитов В и С у медицинских работников
ВИЧ-инфекция и гемоконтактные (парентеральные) вирусные гепатиты В и С относятся к категории преимущественно хронических инфекционных заболеваний, завершающихся развитием синдрома приобретенного иммунодефицита (СПИДа), а при гепатитах цирротической стадии с возможным развитием гепатоцеллюлярной карциномы.
Заражение медицинского работника чаще всего происходит при загрязнении кожи и слизистых оболочек биологическими жидкостями больного (кровью, сывороткой, ликвором, спермой и др.) и при травматизации их во время выполнения медицинских манипуляция (порез, укол, повреждение кожи мелкими обломками кости и др.).
Следует отметить, что заражение вирусами гепатитов В и С, в отличии от ВИЧ происходит значительно легче и чаще в связи с их меньшей инфицирующей дозой и высокой устойчивостью вируса во внешней среде.
Риску профессионального инфицирования чаще всего подвержены медицинские работники, которые соприкасаются с кровью и её компонентами.
В первую очередь, это сотрудники гематологических, реанимационных, стоматологических, гинекологических, хирургических и гемодиализа отделений, процедурных кабинетов, лаборанты и т. д., а также лица, работающие на производстве по заготовке крови, ее компонентов и ее препаратов.
Учитывая возможную инфицированность крови и биологического материала человека вирусами СПИДа, гепатитов, цитомегаловирусами, рядом онкогенных вирусов правила профилактики про¬фессионального заражения распространяются на все лечебно-про¬филактические учреждения, независимо от профиля. Эти правила сводятся к максимальному предотвращению возможности загрязне¬ния кожи и слизистых.
Для профилактики профессионального инфицирования необ¬ходимо:
• при выполнении манипуляций медицинский работник должен быть одет в халат, шапочку, сменную обувь, выходить в которой за пределы лабораторий, отделений запрещается;
• все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук кровью, сывороткой или др. биологическими жидкостями, проводить в перчатках. Резиновые перчатки, снятые единожды, повторно не используются из-за возможности загрязнения рук. В процессе работы перчатки обрабатываются 70% спиртом, 3% хлорамином, спиртовым раствором хлоргексидина и др.
• мед. работники должны соблюдать меры предосторожности при выполнении манипуляций с режущими и колющими инструментами (иглы, скальпели, ножницы); открывая бутылки, флаконы, пробирки с кровью или сывороткой, следует избегать уколов, порезов-перчаток и рук;
• при повреждении кожных покровов необходимо немедленно обработать и снять перчатки, выдавить кровь из ранки, затем под проточной водой тщательно вымыть руки с мылом, обработать их 70% спиртом и смазать ранку 5% раствором йода. При загрязнении рук кровью следует немедленно обработать их тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина или 70% спиртом, вымыть их двукратно теплой проточной водой с мылом и насухо вытереть индивидуаль¬ным полотенцем;
• если кровь попала на слизистые оболочки глаз, их следует сразу же промыть водой или 1% раствором борной кислоты. При попадании на слизистую оболочку - обработать 1% раствора протарго¬ла, на слизистую оболочку рта - полоскать 70% раствором спирта или 0,05% раствором марганцево-кислого калия, или 1% раствором борной кислоты;
• при угрозе разбрызгивания крови и сыворотки, обломков костей следует применять средства защиты глаз и лица: защитную маску, очки, защитные щитки;
• разборку, мойку, ополаскивание медицинского инструмента, пипеток, лабораторной посуды, приборов или аппаратов, которые соприкасались с кровью или сывороткой, надо проводить только в резиновых перчатках после предварительной дезинфекции (обеззараживания);
• мед. работники, имеющие раны на руках, эксудативные пора¬жения кожи или мокнущий дерматит, на время заболевания отстраняются от ухода за пациентами и контакта с предметами для ухода. При необходимости выполнения работы все повреждения должны быть закрыты напальчниками, лейкопластырем;
• бланки направлений в клинико-диагностическую лабораторию категорически запрещается помещать в пробирки с кровью;
• поверхность рабочих столов в конце рабочего дня (а в случае загрязнения кровью - немедленно) обрабатываются 3% раствором хлорамина или 6% раствором перекиси водорода с 0,5% моющего средства. Причем, если поверхность загрязнена кровью или сыво¬роткой, процедуры выполняют дважды: немедленно и с интервалом в 15 минут;
• заполнение учетной и отчетной документации должно вестись на чистом столе;
• запрещается принимать пищу, курить и пользоваться космети¬кой на рабочих столах;
• не стоит проводить никаких парентеральных и лечебно-диаг¬ностических процедур мед.персоналу в тех помещениях, которые предназначены для обслуживания больных.
Для надежной защиты медицинских работников от гепатита В проводится 3-кратная иммунизация по схеме 0-1-6, т.е. через 1 и 6 месяцев после первой прививки (вакцины компании «Мерк, Шарп & Доум», либо «Смят Клейн Бичен», либо «Комбиотек»).
В тех случаях, когда произошла травматизация рук и других час¬тей тела с загрязнением кожи и слизистых биологическими жидко¬стями, мед. работнику, не привитому ранее против гепатита В, прово¬дится иммунизация по эпидимическим показаниям так же 3-кратно в более короткие сроки (по схеме 0-1-2) с ревакцинацией через 12 ме¬сяцев (тел.: 277-5671). Прививка в этих случаях должна проводится как можно скорее - не позднее 1-2 суток после травмы. Травмы мед.работников должны учитываться в каждом лечебно профилактическом учреждении. Пострадавшие должны наблюдаться не менее 6-12 месяцев у врача-инфекциониста. Медицинское наблюдение прово¬дится с обязательным обследованием на маркеры вирусных гепати¬тов В, С и ВИЧ-инфекции.
Хотя первейшей мерой профилактики заражения медицинского персонала вирусом СПИДа является предотвращение непосредственного контакта с кровью и жидкостями инфицированного организма, но, если вследствие повреждения кожи или слизистых оболочек медработни¬ка такой контакт все же случается, необходимо прибегнуть к посттрав¬матической профилактике (ПТП) с помощью таких антиретровирусных средств, как азидотимидин (ретровир), индинавир (криксиван), эпивир (ламивудин) и некоторые другие. /CDC, MMMWR; 1996; 45:468-72: JAMA, 1996 July 10; 276(2).
Контрольными исследованиями установлено, что азидотимидин эффективен в посттравматической ВИЧ-профилактике. Азидотими¬дин примерно на 79% уменьшает риск ВИЧ-сероконверсии после посттравматического ВИЧ-инфицирования. Перспективные иссле¬дования применения азидотимидина для ВИЧ-инфицированных женщин и их детей показывают, что непосредственный профилак¬тический эффект азидотимидин на плод и/или новорожденного выражается в 67%-ном уменьшении перинатальной ВИЧ-транмиссии, защитный эффект изидотимидииа лишь частично объясняется уменьшением титра ВИЧ в материнской крови. Посттравматичес¬кая профилактика (ПТП) точно так же снижает ретровирусную активность. В среднем риск ВИЧ-инфекции при чрезкожном проник¬новении крови от ВИЧ-пациента составляет 0,3%. Наиболее высо¬кий риск инфицирования отмечается при глубоких поражениях кож¬ных покровов, подвергшихся воздействию видимой крови на медицинском инструментарии, при соприкосновении с инструмен¬том, находившимся в вене или артерии пациента (например, с иглой при флеботомии); или в организме больного (следовательно, имев¬шего высокий титр ВИЧ). Чем больший объем крови был задейство-ван, тем выше риск. При поверхностных повреждениях крови риск инфицирования уменьшается и составляет 0,1% и менее в зависи¬мости от объема крови и титра ВИЧ. Пока данные об эффективнос¬ти и токсичности ПТП, а также риске ВИЧ-инфицирования при тех или иных повреждениях кожи ограничены. Однако, в большинстве случаев подобные травмы не приводят к ВИЧ-инфецированию. Поэтому при назначении ПТП следует принимать в расчет ее потен¬циальную токсичность. Если есть такая возможность, лучше обра¬титься за рекомендациями к экспертам в области антиретровирусной терапии и ВИЧ-трансмиссии.
Известно, что сочетание азидотимидина (ретровира) и ламивудина (эпивира) увеличивает антиретровирусную активность и пре¬одолевает формирование резистентных штаммов. Добавление протеазы (индинавир, саквинавир) особенно показано при случаях, свя¬занных с высоким риском инфицирования. Однако, учитывая вероят¬ность возникновения резистентных штаммов, добавление ингибиторов протеазы целесообразно и при ситуациях меньшего риска.
Профилактика ВИЧ-инфекции при риске парентерального инфицирования
Степень риска заражения* Схема химиопрофилактнки
Высокая (тип 1)
При глубоком колющем (иглой) поражении, сопровождающемся кровотечением **) Настоятельно рекомендует.
Комбинированная терапия обязательна в течение 4 недель прием 3-х препаратов 2-х ингибиторов обратной транскпритазы:
азидотимидин 200мг х 3 раза в сутки
ламивудин 150мг х 2 раза в сутки
и одного из ингибиторов протеазы:
индинавир 800мг х 3 раза в сутки
саквинавир 600мг х 3 раза в сутки
Умеренная (тип 2)
«капельным» отделением крови Предлагается:
Комбинированная терапия в том же режиме с использованием в течение 4-х недель ингибиторов обратной транскпритазы
Минимальная (тип 3)
При поверхностной травматизации кожи и слизистых оболочек или попадании биологических жидкостей на слизистые оболочки. Желательно:
Азидотимидотепапия в течение 4-х недель ингибиторов обратной транскпритазы
Примечание:
*) Учитывается ВИЧ-статус пациента, с кровью которого был контакт:
• при травматизации от бессимптомного пациента с высоким уровнем CD4 Т-хелперов и низкой вирусной нагрузкой (количество копий РНК ВИЧ в 1 мл плазмы крови) проводится химиотерапия по 3 типу.
• при развернутой клинической картине заболевания, уровне СП4 Т-хелперов ниже 500 и/или высокой вирусной нагрузке проводят химиопрофилактику по 1 типу (J.Bartlett. Medical Management of IIIV infection, USA, Baltimore, 1998).
**) Если у пациента до контакта не выявлено позитивной серо¬логии и нет данных о его негативном серологическом тесте предпочтителен экспресс-тест, поскольку его результаты станут из¬вестны уже в течение одного часа. Стандартные серологические тесты могут отнять от 3 до 7 дней, но негативный результат ИФА обычно доступен в течение 24-48 часов. Если пациент имеет заболевание с острым синдромом ВИЧ-инфекций, то тестирование должно включать также измерение уровня ВИЧ РНК или ВИЧ ДНК.
Журнал учета аварийных ситуаций, травм медицинского персонала
№ отделения, стационара, профиль подразделения амбулаторно-поликлинического учреждения Фамилия, имя, отчество медицинского работника, получившего травму Должность медицинского работника Дата (час) травмы (аварии) Характер травмы, аварии
1 2 3 4 5
Примечание:
- в графе «Характер травмы» указать - укол иглой в перчатках, без перчаток, порез скальпелем (в перчатках, без перчаток), попа¬дание крови, ликвера, содержимого родовых путей на слизистые оболочки, на кожу;
- в случае получения травмы при обслуживании ВИЧ-инфицированного больного медицинский работник немедленно (в течение 1-х суток) направляется в Центр по профилактике и борьбе со СПИДом.
13. Технология взятия кропи из вены для лабораторных исследований
Для биохимического исследования крови по нескольким пара¬метрам (исследование обмени Солкой, липидов, активности фермен¬тов и др.) следует направлять в лабораторию венозную кровь в хими¬ческой пробирке 8-10. Результаты исследования во многом зависят от техники взятия крови, используемых при этом инструментов, со¬судов, в которых хранится кровь. При взятии крови игла должна быть с коротким срезом и достаточно больших размеров, чтобы не трав¬мировать противоположную стенку вены и не вызвать повреждения эритроцитов с последующим гемолизом. Для многих веществ име¬ется очень высокий перепад концентраций между эритроцитами и плазмой, так что даже незначительный гемолиз может обусловить резкое повышение концентрации определенных веществ в плазме (калия, активности КФ, АСаТ, АЛаТ, ЛДГ). В вене должен быть со¬здан минимальный стаз (продолжительный стаз крови в венах руки повышает концентрацию кальция, общего белка).
Кровь брать сухим охлажденным шприцем, спускать без иглы в сухую пробирку не встряхивая.
13.1. Клинический анализ крови
Кровь на клинический анализ берется из вены во флакон с трилоном в количестве 2 мл. После взятия кровь аккуратно перемешать с консервантом. При необходимости повторить отдельные гематоло¬гические тесты, пациента направляют в лабораторию для взятия крови из пальца. Лаборант в отделении берет у пациента натощак кровь из пальца. Не рекомендуется взятие крови после физической нагрузки, после применения медикаментов, особенно при в/м или в/в введении их, после воздействия рентгеновских лучей и физиоте-рапевтических процедур. Повторные исследования необходимо про¬изводить в одни и те же часы, т. к. морфологический состав крови подвержен колебаниям на протяжении суток. При невыполнении вы-шеуказанных правил результаты исследований будут несравнимы между собой и могут привести к ошибочному толкованию.
13.2. Кровь для определения группы и резус-фактора
Из вены 5,0-6,0 мл. в сухую пробирку без предварительной под¬готовки. Каждая пробирка с приклеенной этикеткой, на которой Ф., И., О., группа крови, Ph фактор, № истории болезни.
13.3. а) на С-реактивный белок
б) на ревматоидный фактор
в) для определения титра аитистрептолизина-0
Натощак из вены в сухую пробирку 5,0 мл можно все в одну пробирку, но три разных направления.
13.4. Для определения титра антистрептокиназы
Натощак 6,0-7,0 мл крови в пробирку, содержащую 5% раствор цитрата натрия (из расчета 0,1 мл. на 1 мл. крови).
13.5. Для определения антител к различным группам крови (у беременных)
Также, как на группу крови и Ph-фактор. В сухую пробирку.
13.6. Для определения антител в ткани щитовидной железы
Натощак в сухую пробирку 5,0 мл. крови.
13.7. Для определения Циркулирующих иммунных комплексов
В течение 1 часа после забора кровь доставить в лабораторию. В сухую пробирку забрать 4,0 мл. крови из вены.
13.8. Для определения иммуноглобулинов классов LA и М
Натощак в сухую пробирку 5,0 мл крови из вены. Кровь доста¬вить в лабораторию в день забора.
13.9. Для определения Т и В лимфоцитов
Натощак во флакон с консервантом забрать кровь из вены до метки на флаконе, аккуратно перемешать. Доставить обязательно в день забора. В направлении указать количество лейкоцитов и лимфоци¬тов из последнего клинического анализа крови.
13.10. Посев крови на стерильность
Берут у постели пациента или в перевязочной стерильным шпри¬цем. Нельзя пользоваться шприцем со «стерильного стола», нельзя про¬верять проходимость шприца и иглы воздухом, чтобы избежать по¬падания микроорганизмов из воздуха. Посев на питательные среды не¬обходимо проводить во время подъема температуры, в начале появле¬ния лихорадки до начала антибактериального химиотерапевтического лечения или через 12-24 часа после последнего введения. Кожу над пун¬ктируемой веной обрабатывают 70 град, спиртом, затем 5% настойкой йода, затем снова спиртом. Если у пациента стоит подключичный ка¬тетер, можно воспользоваться им для получения крови. Для этого дают свободно стечь некоторому количеству крови в пробирку, затем на¬бирают кровь в шприц. Посев крови осуществляется у постели пациен¬та в две среды «Двойную» и «Среду для контроля стерильности» по 5 мл. в каждый флакон. Для этого предварительно снимается бумажный колпачок вместе с ватно-марлевой пробкой, а бумажный вкладыш про¬калывается иглой и выпускается кровь. При посеве крови на второй флакон со средой часть крови должна остаться в шприце, что умень¬шает риск загрязнения посева. Флаконы со средами выдаются баклабораторией и могут храниться в отделении до нужного момента в холо¬дильнике при температуре + 4, + 6 градусов, перед посевом среды со-греваются при комнатной температуре. Засеянные среды хранятся при комнатной температуре, затем доставляются в лабораторию.
13.11 Кровь на гемокультуру (тифопаратифозную группу инфекций)
Забор крови производится на высоте подъема температуры в лю¬бое время суток на среду «Желчный бульон». Следует помнить, что бактериемия при брюшном тифе предполагается в первые 10-15 дней от начала заболевания. Кровь забирается с соблюдением правил асептики и у постели пациента засевается в питательную среду (5 мл., крови на 50 мл. среды). Содержимое флакона тщательно перемешивается и доставляется в баклабораторию. Если посев осуществлен после 15.00, он оставляется при комнатной температуре до утра и направляется в лабораторию.
13.12. Кровь на серологические исследования
1. РНГА с риккетсиозным диагностикумом.
2. РНГА с сальмонеллезным 0 комплексным фа-диагиостикумом.
3. РНГА с дизентерийными диагностикумами.
4. РНГА с псевдотуберкулезным и кишечноиерсениозным диаг¬ностикумами.
5. Реакция Райта-Хеддельсона на бруцеллез.
5-7 мл. крови из локтевой вены забирают в стерильную пробир¬ку натощак, дважды через 10-14 дней (для получения парных сыво¬роток). Это поможет определить фазу инфекционного процесса и степень иммунного ответа организма.
13.13. Кровь на коагулограмму
Кровь берется до метки в пробирки , взятые в лаборатории накануне.
При исследовании свертывающей и антисвертывающей систем крови (показатели коагулограммы) следует выполнить следующий порядок забора крови:
1. Кровь брать строго натощак.
2. Кожа над местом прокола обрабатывается спиртом (не эфиром!) Прокол производят после высыхания спирта.
Желательно кровь брать без наложения жгута, т. к. перетяжка ко¬нечности активирует свертывание крови, тромбоцитарный гемос¬таз и особенно фибринолиз. При плохих венах допустимо кратков¬ременное (лишь во время входа иглы в вену, не более 2-х минут) наложение слабой перетяжки - не более 30 мм ртутного столба. Пункция должна быть, по возможности, малотравматичной.
Длительные поиски вены, как и очень медленный ток крови из иглы, снижают точность исследования. Кровь в пробирки, предва¬рительно взятые в лаборатории, набирают свободным током, перемешивая ее с антикоагуляцитом покачиванием или легким встряхива¬нием (без вспенивания). Интенсивное встряхивание и вспенивание усиливает гемолиз эритроцитов, что искажает многие параметры коагулограммы. Первые 5-6 капель крови выпускаются на тампон и для исследования не берутся, т. к. в них может быть заметная при¬месь тканевого тромбопластина.
3. При назначении нескольких исследований сначала берется кровь на коагулограмму, протромбированный индекс, фибриноген.
13.14. Кровь на фибриноген, протромбин
Кровь берется до метки, в пробирки, накануне взятые в лаборато¬рии, и аккуратно перемешивается. (Технология взятия крови, как 13.13).;
13.15. Кровь на холестерин, фракции липопротеидов
Кровь берется в сухую пробирку, 3-5 мл. Рекомендуется предва¬рительное голодание.
13.16. Кровь на билирубин, трансаминазу, К, Ма
Не рекомендуется принимать аскорбиновую кислоту. Кровь бе¬рется в сухую пробирку и доставляется в кол-ве 7-10 мл.
13.17. Кровь на вирусные гепатиты
В сухую центрифужную пробирку забрать 5,0 мл. венозной кро¬ви. Пробирку с кровью закрыть резиновой пробкой. К каждой про¬бирке приложить направление. В направлении указать:
• Ф.И.О. пациента,
• отделение, палату,
• дату забора крови,
• диагноз.
13.18. Памятка по забору и доставке крови на СПИД
Забор крови
1. В сухую центрифужную пробирку забрать 4-5 мл. венозной крови.
2. Пробирки с кровью нужно пронумеровать. Номера на пробирках и направлениях должны совпадать. Пробирки закрываются ватно-марлевой или резиновой пробкой и устанавливаются в контей¬нер с уплотнителем (вата, поролон).
3. Категорически запрещается забор крови в пробирки с отбиты¬ми краями.
4. Работать с исследуемым материалом только в резиновых пер¬чатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лей¬копластырем или напальчником. Особое внимание следует обращать на условия забора крови, чтобы исключить заражение. Работать надо осторожно во избежание случайных уколов иглой, разбитой посудой.
5. Кровь может храниться в холодильнике не более суток. Не подлежат доставке в лабораторию гемолизированная и проросшая кровь. Каждая пробирка маркируется, составляется направление в 2-х эк-земплярах.
Доставка крови
Забранную кровь необходимо доставить в лабораторию в день забора с 8.30. до 10.00.
1. Кровь доставляется в лабораторию в жестяном контейнере.
2. Отдельно доставляется направление со сведениями об обсле¬дуемых лицах.
Необходимо указать:
• диагноз,
• регистрационный номер,
• номер истории болезни,
• отделение, палату,
• Ф., И., О. (полностью),
• пол,
• возраст,
• домашний адрес (полностью),
• код,
• дату забора крови,
• дату доставки материала,
• фамилию лица, забравшего материал. Направления доставляются в 2-х экземплярах:
1 экземпляр - направление на каждого обследуемого,
2 экземпляр — общее направление, где списком перечислены сведения о всех обследуемых.
Укладка для забора крови на форму 50
1. Бикс.
2. Шприцы с иглами одноразовыми, не менее 2-х.
3. Чистые перчатки.
4. Стеклянные чистые, сухие пробирки с резиновыми пробками
5. Штатив.
6. Стерильные ватные тампоны.
7. 70 градусный этиловый спирт.
8. 1-2% водный раствор борной кислоты для закапывания в глаза.
9. 1-2% раствор проторгола для закапывания в нос.
10. 6% р-р перекиси водорода.
11. Лейкопластырь.
12. Флакон с сухим марганцово-кислым калием.
13.19. Забор крови на RW
Кровь берется в сухую пробирку 3-5 мл. В направлении указать:
• ЛПУ, Ф., И., О. пациента,
• отделение, палату,
• дату забора крови,
• диагноз.
13.20. Кровь на гормоны
Кровь берется в сухую пробирку 6-8 мл натощак. Доставляется в лабораторию в тот же день.
14. Порядок работы процедурной медсестры
с кабинетами и отделениями переливания крови
1. Выдача крови, кровезаменителей в плановом порядке по тре¬бованию лечащего врача проводится с 9.00 до 11.00.
2. Заявки на кровь, компоненты крови, кровезаменители выпи¬сываются на форменных аптечных бланках с указанием количества, Ф., И., О. пациента, диагноза, № истории болезни и доставляются в ОПК до 14.00, вместе с историей болезни.
3. В экстренных случаях требование на кровь, кровезаменители подписывает начмед и кровь получают в течение дня.
4. Кровь на операцию заказывает зав. отделением или лечащий врач, по заявке. Верхнюю часть требования заполняет лечащий врач или зав. отделением, нижнюю сотрудники ОПК.
При получении крови необходимо поставить число, название от¬деления, операцию, фамилию сотрудника, получившего кровь.
15. Инфекционный контроль
Инфекционный контроль - это система эффективных профилак¬тических и противоэпидемических мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения госпитальных инфекций, основанная на результатах эпидемической диагностики.
Целью инфекционного контроля являются снижение заболеваемо¬сти, летальности и экономического ущерба от госпитальных инфек¬ций. Госпитальная инфекция - это любые инфекционные заболева¬ния, проявившиеся в условиях стационара. К госпитальным инфек¬циям также относятся случаи инфицирования медицинских работни¬ков ЛПУ, возникшие в результате их профессиональной деятельности. Требования к выполнению санитарно-противоэпидемического и стерилизационно-дезинфицирующего режимов регламентируются приказами МЗ СССР № 288/76, № 720/78, МЗ РФ № 170/94, ОСТом 42 21-2-85 и методическими указаниями по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначе¬ния МУ-287-Ш от 30.12.98 г.
15.1. Основные требования к работе процедурной медсестры
В целях предупреждения инфицирования пациентов необходи¬мо проводить все виды инъекций, строго соблюдая правила асепти¬ки и антисептики. Для каждого пациента используется индивиду¬альный стерильный шприц и игла. Все манипуляции процедурная медсестра проводит в стерильных перчатках. Для выполнения парантеральных вмешательств используется стерильная укладка, кото¬рая состоит из лотка и стерильной пеленки.
Стерильная укладка готовится на 1 рабочую смену (б часов). Пин¬цеты, корнцанги и другой медицинский инструментарий для захва¬та стерильного материалам процедурных кабинетах хранят в сухом виде на стерильной поверхности (в лотке между двумя слоями сте¬рильной пеленки). Замену использованных пинцетов и другого ин¬струментария для захвата стерильного материала проводят как мож¬но чаще.
Хранить стерильные изделия в растворе 90 градусного спирта не следует, так как спирт не оказывает стерилизующего действия и в нем могут выживать устойчивые формы микроорганизмов (споры), что может привести к вторичному обсеменению ранее простерилизованных изделий.
Использованные шприцы, иглы, катетеры, перчатки, системы для инфузионной терапии и переливания крови перед утилизацией под¬вергают дезинфекции по одному из разрешенных режимов.
Лабораторная посуда для определения группы крови после ис¬пользования должна подвергаться дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации, согласно инструкции МЗ РФ от 1991 г. По мерам профилактики распространения инфекционных заболе¬ваний при работе в КДЛ ЛПУ и приказа МЗ РФ № 408 /89 г.
15.2. Дезинфекция, ПСО, общие положения
Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация из¬делий медицинского назначения (далее изделия) направлены на про¬филактику внутрибольничных инфекций у пациентов и персонала лечебно-профилактических учреждений.
Дезинфекцию изделий проводят с целью уничтожения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов-вирусов ( в том числе возбудителей парентеральных вирусов гепатитов, ВИЧ- инфекции), бактерий (включая микобактерии туберкулеза), грибов (включая гри¬бы рода Кандида) - на изделиях медицинского назначения, в их кана¬лах и полостях.
Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у паци¬ента. После дезинфекции изделия применяют по назначению или (при наличии показаний) подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации. В качестве средств дезинфекции, предстерилизацион¬ной очистки и стерилизации используют только разрешенные в уста¬новленном порядке в Российской Федерации физические и химичес¬кие средства.
При выборе средств следует учитывать рекомендации изготови¬телей изделий, касающиеся воздействия конкретных средств (из числа разрешенных в нашей стране для данной цели) на материалы этих изделий. При проведении дезинфекции, предстерилизацион¬ной очистки и стерилизации допускается использование только того оборудования (установки, моечные машины, стерилизаторы и др.), которое разрешено в установленном порядке к промышленному выпуску и применению (в случае импортного оборудования - раз¬решенного к применению) в Российской Федерации.
Емкости с растворами дезинфицирующих, моющих, стерилизу¬ющих средств должны быть снабжены крышками, иметь надпись с указанием названия средства, его концентрации, назначения, даты приготовления (для готовых к применению средств, разрешенных для многократного использования, указывают дату начала исполь¬зования средства).
15.2.1. Дезинфекция физическими методами
1. Физический метод дезинфекции надежей, экологически чист и безопасен для персонала, поэтому в тех случаях, когда позволяют условия (оборудование, номенклатура изделий и т.д.) при проведении дезинфекции изделий предпочтение следует отдать этому методу.
2. Дезинфекцию с использованием физического метода выпол¬няют:
• способом кипячения в дистиллированной воде или в воде с до¬бавлением натрия двууглекислого (сода пищевая);
• паровым методом ( в паровом стерилизаторе - автоклаве);
• воздушным методом (в воздушном стерилизаторе).
3. Дезинфекции способом кипячения подвергают изделия из стек¬ла, металлов, термостойких полимерных материалов и резины. Пе¬ред кипячением изделия очищают от органических загрязнений, промывая водопроводной водой. Отсчет времени дезинфекционной выдержки начинают с момента закипания воды.
4. Паровым методом дезинфицируют изделия из стекла, метал¬лов, резины, латекса, термостойких полимерных материалов. Пред¬варительная очистка изделий не требуется. Их складывают в стерилизационные коробки и помещают в паровой стерилизатор. Дезин¬фекция осуществляется воздействием водяного насыщенного пара под избыточным давлением.
5. Дезинфекцию воздушным методом изделий из стекла, метал¬лов, силиконовой резины проводят без упаковки в воздушных сте¬рилизаторах. Этим методом можно дезинфицировать только изде¬лия, не загрязненные кровью.
Присоединяйтесь к ОК, чтобы подписаться на группу и комментировать публикации.
Нет комментариев